Rok akademicki 2023/24

Regulamin zajęć (pobierz)

Osoba odpowiedzialna za dydaktykę: dr Dagmara Szmajda-Krygier

e-mail: dagmara.szmajda@umed.lodz.pl

 

WYKŁADY

Prowadzący:

prof. dr hab. Marek Mirowski, prof. dr hab. Ewa Balcerczak, dr Jacek Pietrzak, dr Rafał Świechowski, dr Agnieszka Wosiak

Terminy i miejsce:

Stacjonarnie, poniedziałki, godz. 13:15-15:07, sala 4B

Daty: 21.02 (s.3, środa), 26.02, 04.03, 11.03, 18.03, 25.03, 08.04, 15.04, 22.04 (14:30!), 29.04, 06.05, 13.05

 

ĆWICZENIA/SEMINARIA

Terminy i miejsce:

Ćwiczenia:

Poniedziałki

godz: (prelekcja 8:45-9:30) 9:45-12:45 daty:

26.02 Ćwiczenie 1 gr 1-5 prelekcja s. 4A
04.03 Ćwiczenie 2 gr 1-5 prelekcja s. 4A
11.03 Ćwiczenie 3 gr 1-5 prelekcja s.4A
18.03 Ćwiczenie 4 gr 1-5 prelekcja s. 4A

Zajęcia komputerowe poniedziałki 8:15-12:15
25.03 – sala komputerowa gr. 1 i 2
08.04 – sala komputerowa gr. 3, 4 i 5

zajęcia praktyczne: sala ćwiczeń Zakładu Biochemii Farmaceutycznej

zajęcia komputerowe: pracownia komputerowa, parter

 

Wyniki wejściówek:

Ćwiczenie 1 – wyniki (pobierz)

Ćwiczenie 2 – wyniki (pobierz)

Ćwiczenie 3 – wyniki (pobierz), poprawa (pobierz)

Ćwiczenie 4 – wyniki (pobierz)

 

Seminaria:

poniedziałki:

data	godzina	seminarium I	seminarium II
15.04	11:00-12:52	Sala 221 gr 1	Sala 4B gr 2
22.04	12:30-14:22	Sala 214 gr 2	Sala 4B gr 1

 

Treści wykładów:

1. Podstawy biologii molekularnej
2. Nomenklatura genów.
3. Cykl komórkowy i apoptoza.
4. Regulacja procesu transkrypcji genów.
5. Zjawisko metylacji.
6. Biologia molekularna nowotworów.
7. Komórki macierzyste.
8. Techniki stosowane w laboratorium molekularnym do badania kwasów nukleinowych i białek
9. Mikromacierze jako narzędzie diagnostyczne.
10. Techniki molekularne w medycynie personalizowanej
11. Bazy danych.

Treści zajęć w grupach łączonych (seminaria)

1. Przegląd metod i systemów do izolowania kwasów nukleinowych
2. PCR jako podstawowe narzędzie biologii molekularnej; modyfikacje.
3. Zastosowanie technik biologii molekularnej w diagnostyce i medycynie.

Treści zajęć laboratoryjnych

1. Izolowanie kwasów nukleinowych z materiału biologicznego.
2. Przeprowadzenie PCR i reakcji odwrotnej transkrypcji.
3. Rozdział elektroforetyczny.
4. Interpretacja i prezentacja wyników badań.
5. Projektowanie starterów/sond. Wykorzystanie narzędzi bioinformatycznych w badaniach – bazy danych.